<div dir="auto">Hello everyone,<div dir="auto"><br></div><div dir="auto">We are looking for a old spare 'INSERTION ROD" for CRYO-TEM FEI G2 POLARA. Since FEI has stopped its production and replacement costs are too high, we are searching for an old/used/second-hand spare of some POLARA FACILITY.</div><div dir="auto"><br></div><div dir="auto">Thanks and regards,</div><div dir="auto"><br></div><div dir="auto">Anshu Dutta</div><div dir="auto"><i>CRYO-EM FACILITY MANAGER,</i></div><div dir="auto"><i>CENTRAL INSTRUMENTATION FACILITY, CSIR-IICB, KOLKATA</i></div></div><br><div class="gmail_quote"><div dir="ltr" class="gmail_attr">On Tue, Feb 25, 2020, 4:34 AM  <<a href="mailto:3dem-request@ncmir.ucsd.edu">3dem-request@ncmir.ucsd.edu</a>> wrote:<br></div><blockquote class="gmail_quote" style="margin:0 0 0 .8ex;border-left:1px #ccc solid;padding-left:1ex">Send 3dem mailing list submissions to<br>
        <a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a><br>
<br>
To subscribe or unsubscribe via the World Wide Web, visit<br>
        <a href="https://mail.ncmir.ucsd.edu/mailman/listinfo/3dem" rel="noreferrer noreferrer" target="_blank">https://mail.ncmir.ucsd.edu/mailman/listinfo/3dem</a><br>
or, via email, send a message with subject or body 'help' to<br>
        <a href="mailto:3dem-request@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem-request@ncmir.ucsd.edu</a><br>
<br>
You can reach the person managing the list at<br>
        <a href="mailto:3dem-owner@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem-owner@ncmir.ucsd.edu</a><br>
<br>
When replying, please edit your Subject line so it is more specific<br>
than "Re: Contents of 3dem digest..."<br>
<br>
<br>
Today's Topics:<br>
<br>
   1. Re: Insertion of Holder 626 (Patricia Grob)<br>
   2. Re: Insertion of Holder 626 (Shi, Dan (NIH/NCI) [E])<br>
<br>
<br>
----------------------------------------------------------------------<br>
<br>
Message: 1<br>
Date: Mon, 24 Feb 2020 14:57:49 -0800<br>
From: Patricia Grob <<a href="mailto:pgrob@berkeley.edu" target="_blank" rel="noreferrer">pgrob@berkeley.edu</a>><br>
To: TALAVERA PEREZ Ariel <<a href="mailto:Ariel.Talavera@ulb.be" target="_blank" rel="noreferrer">Ariel.Talavera@ulb.be</a>><br>
Cc: "<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a>" <<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a>><br>
Subject: Re: [3dem] Insertion of Holder 626<br>
Message-ID: <<a href="mailto:21B285DD-8F19-4F3A-B201-EEDE5B579B3D@berkeley.edu" target="_blank" rel="noreferrer">21B285DD-8F19-4F3A-B201-EEDE5B579B3D@berkeley.edu</a>><br>
Content-Type: text/plain; charset="utf-8"<br>
<br>
Hi Ariel,<br>
<br>
<br>
This sounds like a very long airlock pumping time to me. I am not sure about the TALOS airlock but on our Tecnai microscopes we use a 60-90 s airlock cycle time.<br>
<br>
You might have a leak in the airlock if it is not sufficient, either from the holder end or on the stage, which you?ll have to determine (or the pump is not very good!). -154 degrees is indeed pretty high, we typically get -170 or lower during transfer with our  DH 626 Gatan cryo-holders. You could try and monitor the holder  temperature change during the whole transfer time and see when it starts rising. Make sure you start with a holder at -190 degrees C when you first transfer it form the workstation to the airlock. If the rise is immediate, maybe there is an issue with your holder (leak in the dewar at any seal point, sorbent needing to be replaced or envelope needing to be cleaned, or all of the above). You can monitor the temperature of the holder in the pumping station with liquid nitrogen in the dewar (only pumping down on the tip, not the dewar), and make sure that the lowest temperature stays in the -170 to -180 range once cooled, otherwise the dewar is not maintaining vacu<br>
 um and needs maintenance. <br>
<br>
Good luck.<br>
Cheers,<br>
<br>
Patricia<br>
<br>
_______________________________<br>
Patricia Grob, Ph.D.<br>
Research Specialist<br>
Nogales Lab<br>
HHMI at UC Berkeley<br>
Molecular & Cell Biology Department / QB3,<br>
Stanley Hall #742<br>
University of California, Berkeley<br>
Berkeley, CA 94720-3220<br>
Phone: (510)666-3335    Fax: (510)666-3336<br>
E.M. suite B307: (510)666-3339<br>
URL: <a href="http://cryoem.berkeley.edu" rel="noreferrer noreferrer" target="_blank">cryoem.berkeley.edu</a><br>
Email: <a href="mailto:pgrob@berkeley.edu" target="_blank" rel="noreferrer">pgrob@berkeley.edu</a><br>
<br>
<br>
<br>
<br>
> On Feb 24, 2020, at 5:13 AM, TALAVERA PEREZ Ariel <<a href="mailto:Ariel.Talavera@ulb.be" target="_blank" rel="noreferrer">Ariel.Talavera@ulb.be</a>> wrote:<br>
> <br>
> Dear all,<br>
> <br>
> I am using a Gatan 626 holder on a side entry TALOS microscope. I am <br>
> getting problems with very frequent crystalline ice formation on the <br>
> grids. Some times I get a mix of vitreous and crystalline water, but <br>
> must of the time I only get crystalline water. I have been extra careful <br>
> during sample preparation, and transferring the grind on to the holder, <br>
> and I have done 48 hours holder bake out before insertion, but I still <br>
> get ice on the grid.<br>
> <br>
> I monitored the temperature of the holder during the insertion process, <br>
> including 3 minutes for the Airlock pump. During those 3 minutes the <br>
> temperature rises up to -152.2. Can this be the reason of the unwanted <br>
> ice formation? How high can be the temperature of the holder to ensure a <br>
> nice vitreous water?<br>
> <br>
> I am also getting vacuum problems while inserting the holder. This <br>
> process has resulted to be extremely, extremely sensitive. After the 3 <br>
> minutes Airlock pumping (I cannot give longer time because of the <br>
> aforementioned temperature issue) as soon as I open the column port the <br>
> vacuum either rises to 99 Log or completely crashes the column vacuum. <br>
> This has happened with two different holders either cooled with liquid <br>
> nitrogen or at room temperature. So, my question: Is this insertion <br>
> process always that  picky or it can be that there is something wrong <br>
> with the holders/Airlock pump?<br>
> <br>
> Thanks a lot in advanced.<br>
> <br>
> Best regards.<br>
> <br>
> Ariel<br>
> <br>
> -- <br>
> Ariel TALAVERA PEREZ, PhD<br>
> Center for Microscopy and Molecular Imaging (CMMI)<br>
> Laboratory of Microscopy<br>
> Universit? Libre de Bruxelles<br>
> Rue Adrienne Bolland, 8<br>
> B-6041 Gosselies, Belgium<br>
> Phone +32 (0)26509866<br>
> <br>
> _______________________________________________<br>
> 3dem mailing list<br>
> <a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a><br>
> <a href="https://mail.ncmir.ucsd.edu/mailman/listinfo/3dem" rel="noreferrer noreferrer" target="_blank">https://mail.ncmir.ucsd.edu/mailman/listinfo/3dem</a><br>
<br>
-------------- next part --------------<br>
An HTML attachment was scrubbed...<br>
URL: <<a href="http://mail.ncmir.ucsd.edu/pipermail/3dem/attachments/20200224/8379466e/attachment-0001.html" rel="noreferrer noreferrer" target="_blank">http://mail.ncmir.ucsd.edu/pipermail/3dem/attachments/20200224/8379466e/attachment-0001.html</a>><br>
<br>
------------------------------<br>
<br>
Message: 2<br>
Date: Mon, 24 Feb 2020 23:03:42 +0000<br>
From: "Shi, Dan (NIH/NCI) [E]" <<a href="mailto:dan.shi@nih.gov" target="_blank" rel="noreferrer">dan.shi@nih.gov</a>><br>
To: "<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a>" <<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a>><br>
Subject: Re: [3dem] Insertion of Holder 626<br>
Message-ID:<br>
        <<a href="mailto:BL0PR0901MB454665C3D181129EF1325B8DF2EC0@BL0PR0901MB4546.namprd09.prod.outlook.com" target="_blank" rel="noreferrer">BL0PR0901MB454665C3D181129EF1325B8DF2EC0@BL0PR0901MB4546.namprd09.prod.outlook.com</a>><br>
<br>
Content-Type: text/plain; charset="utf-8"<br>
<br>
The modified procedure from the traditional one for our L120C is<br>
<br>
<br>
  1.  Start the turbo pump and wait it reaching 100% speed and set ?airlock pump time? to 30 ? 60 seconds<br>
  2.  Set the alpha at -55 to -60 degree and click on ?set alpha? to tilt the compustage<br>
  3.  Insert the 626 holder to the engaging position and select the cryo-ST holder from the screen<br>
  4.  Hold the cryo-holder and click on ?set alpha? to rotate the compustage back to 0 degree at least 10 seconds before the airlock pump time expired<br>
  5.  Wait until the red light on the compustage off, rotate the cryo-holder to the insertion position and insert the holder in smoothly.<br>
  6.  Feel free to breath<br>
<br>
Best,<br>
<br>
Dan<br>
<br>
From: Denis Chr?tien <<a href="mailto:denis.chretien@univ-rennes1.fr" target="_blank" rel="noreferrer">denis.chretien@univ-rennes1.fr</a>><br>
Sent: Monday, February 24, 2020 4:54 PM<br>
To: <a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a><br>
Subject: Re: [3dem] Insertion of Holder 626<br>
<br>
Sorry, I mentioned Thermo (for the O-rings), but for the 626 it would be Gatan (still cost about one arm and a leg ...)<br>
<br>
I forgot to mention also the -60? insertion procedure that Wim also quoted. It really improved our ability to insert cryo-holders without leaks (and risks of warming-up the specimen by spilling all the LN2 outside the cryo-holder):<br>
<br>
1) Rotate the cryo-stage to -60?<br>
2) Pre-pump the airlock (wait until red light goes off)<br>
3) insert the cryo-holder and wait (again) until red light goes off (time fixed by yourself, between 30 sec and one min of pumping).<br>
4) stop breathing*<br>
5) Hold the cryo-holder and reset the stage to 0?. Again, wait until red light goes off!<br>
6) Rotate the cryo-holder and insert it gently (don?t let the vacuum aspire it abruptly inside the stage!)<br>
7) Check that the vacuum didn?t went to high during insertion<br>
8) Breath*<br>
* optional<br>
<br>
Denis<br>
<br>
<br>
Le 24 f?vr. 2020 ? 22:01, Denis Chr?tien <<a href="mailto:denis.chretien@univ-rennes1.fr" target="_blank" rel="noreferrer">denis.chretien@univ-rennes1.fr</a><mailto:<a href="mailto:denis.chretien@univ-rennes1.fr" target="_blank" rel="noreferrer">denis.chretien@univ-rennes1.fr</a>>> a ?crit :<br>
<br>
If we order O-rings from Thermo, it cost one arm? Does anyone have references for ? standard ? O-rings that we can buy elsewhere for a much cheaper price?<br>
<br>
To come back to the original questions, we still use 626 and other side-entry holders. Sometime we face vacuum problems. In our experience these are mainly due to (as already said):<br>
<br>
- Dusts on the O-ring (or inside the airlock system). Inspect the O-ring and also try to blow dry-air inside the airlock. Maybe the airlock tube is damage, then ask Thermo for repair ? :-(<br>
<br>
- Dry O-rings: regularly put some (not a lot !) vacuum grease on it. Be careful not to scratch the metal when removing it or damaging the O-ring. Change it if dry or obviously damaged.<br>
<br>
- One frequent issue with cryo-holders: do not fill the cryo-holder station with to much LN2, you may freeze the O-ring and it will inevitably lead to a vacuum leak (very reproducible!). To limit this issue, we slightly lift the cryo-holder station with a rectangular grid box to avoid LN2 going into contact with the O-ring. We (not every one of us) cool the cryo-stage inside the microscope. Then the work-station is cooled just before inserting the specimen grid on the holder. This also limits the risk of cooling the O-ring.<br>
<br>
- We ? pre-pump ? the airlock, and pump for 1 min before inserting (on a Tecnai G2 Sphera). 3 min of pumping seams a lot!<br>
<br>
- Change of the zeolithe, grease on the valve O-ring of the cryo-holder, periodic zeolithe cycle (we do it every session): it improves stability on our side.<br>
<br>
Best<br>
<br>
Denis<br>
<br>
<br>
Le 24 f?vr. 2020 ? 21:26, David Stokes <<a href="mailto:stokes@nyu.edu" target="_blank" rel="noreferrer">stokes@nyu.edu</a><mailto:<a href="mailto:stokes@nyu.edu" target="_blank" rel="noreferrer">stokes@nyu.edu</a>>> a ?crit :<br>
<br>
I used to do the following prior to every session:<br>
Remove o-ring from holder.<br>
Clean o-ring off with kimwipes and fingers (I didn't bother to use any solvent).<br>
Clean o-ring groove with kimwipes.<br>
Blow away fibers with compressed air.<br>
Lightly grease o-ring.<br>
Inspect o-ring and o-ring groove under dissecting scope and carefully remove any fibers prior to re-installation onto the holder.<br>
Don't scratch the o-ring groove. In fact, don't touch it with forceps. Use compressed air.<br>
<br>
During the inspection process, you will see whether there are any nicks or flat spots in the o-ring. If so, then consider a replacement. If there is a scratch in the o-ring groove, then you might need a new holder (or maybe not).<br>
Also make sure you really have the right sized o-ring. At some point in ancient history, they changed the size slightly, such that CM200 o-ring was a bit fatter than the one for the CM12 stage.<br>
<br>
David<br>
<br>
<br>
On 2/24/2020 3:10 PM, Sharon G Wolf wrote:<br>
<br>
Terje<br>
We also have suffered for years from vacuum breaks. We tried EVERYTHING. The most effective thing was to (believe it or  not) change the o-ring every single session.<br>
Recently we understood this was due to the fibers and other "dirt"  that we observed on the o-rings every time we looked with the binocular after inserting and removing the holder from the microscopes, transfer stations or pumping station. We embarked on a ?cleaning program? where we gently swab all the above mentioned devises. It?s now slowly getting better. We are still changing the o rings but we hope it will soon no longer be necessary, once all the "stuff" that accumulated over the years is cleaned out from those places.<br>
Sharon<br>
<br>
<br>
Sent from my iPhone<br>
<br>
<br>
On 24 Feb 2020, at 19:28, Dokland, Terje <<a href="mailto:dokland@uab.edu" target="_blank" rel="noreferrer">dokland@uab.edu</a><mailto:<a href="mailto:dokland@uab.edu" target="_blank" rel="noreferrer">dokland@uab.edu</a>>> wrote:<br>
<br>
?We have also had persistent vacuum break problems with our 626 holder in our Tecnai F20 over the past two years. About 50% of the time inserting the holder breaks the vacuum. I though it was unique to this holder, but with the Elsa holder that we recently acquired it is even worse: vacuum break about 90% if the time. We?ve changed O rings, had the airlock disassembled and cleaned, but the problem persists.<br>
<br>
That being said, it never affected ice quality, and the temperature usually doesn?t go above -165 C. When the vacuum recovers it?s usually at 25-30 log or so and back to <10 within a half hour. It?s really annoying though.<br>
<br>
In my experience as long as the temperature doesn?t rise above -150C you should be ok.<br>
<br>
It helps to make sure the tip is very cold by submerging it completely in lN2 before inserting.<br>
<br>
Terje<br>
<br>
Sent from my iPhone<br>
<br>
<br>
On Feb 24, 2020, at 7:13 AM, TALAVERA PEREZ Ariel <<a href="mailto:Ariel.Talavera@ulb.be" target="_blank" rel="noreferrer">Ariel.Talavera@ulb.be</a><mailto:<a href="mailto:Ariel.Talavera@ulb.be" target="_blank" rel="noreferrer">Ariel.Talavera@ulb.be</a>>> wrote:<br>
<br>
Dear all,<br>
<br>
I am using a Gatan 626 holder on a side entry TALOS microscope. I am<br>
getting problems with very frequent crystalline ice formation on the<br>
grids. Some times I get a mix of vitreous and crystalline water, but<br>
must of the time I only get crystalline water. I have been extra careful<br>
during sample preparation, and transferring the grind on to the holder,<br>
and I have done 48 hours holder bake out before insertion, but I still<br>
get ice on the grid.<br>
<br>
I monitored the temperature of the holder during the insertion process,<br>
including 3 minutes for the Airlock pump. During those 3 minutes the<br>
temperature rises up to -152.2. Can this be the reason of the unwanted<br>
ice formation? How high can be the temperature of the holder to ensure a<br>
nice vitreous water?<br>
<br>
I am also getting vacuum problems while inserting the holder. This<br>
process has resulted to be extremely, extremely sensitive. After the 3<br>
minutes Airlock pumping (I cannot give longer time because of the<br>
aforementioned temperature issue) as soon as I open the column port the<br>
vacuum either rises to 99 Log or completely crashes the column vacuum.<br>
This has happened with two different holders either cooled with liquid<br>
nitrogen or at room temperature. So, my question: Is this insertion<br>
process always that  picky or it can be that there is something wrong<br>
with the holders/Airlock pump?<br>
<br>
Thanks a lot in advanced.<br>
<br>
Best regards.<br>
<br>
Ariel<br>
<br>
--<br>
Ariel TALAVERA PEREZ, PhD<br>
Center for Microscopy and Molecular Imaging (CMMI)<br>
Laboratory of Microscopy<br>
Universit? Libre de Bruxelles<br>
Rue Adrienne Bolland, 8<br>
B-6041 Gosselies, Belgium<br>
Phone +32 (0)26509866<br>
<br>
_______________________________________________<br>
3dem mailing list<br>
<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a><mailto:<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a>><br>
<a href="https://urldefense.proofpoint.com/v2/url?u=https-3A__mail.ncmir.ucsd.edu_mailman_listinfo_3dem&d=DwIGaQ&c=slrrB7dE8n7gBJbeO0g-IQ&r=hgbDG_ZdQaorZsucl01zHg&m=Yn2a7P10qylNPjdZ499rPbNzetpn8RyAV870SJbr0hg&s=wwZt0ruHRcbRcKBOUphvqWKC9QI8lDUPt_L8YiYwln4&e=" rel="noreferrer noreferrer" target="_blank">https://urldefense.proofpoint.com/v2/url?u=https-3A__mail.ncmir.ucsd.edu_mailman_listinfo_3dem&d=DwIGaQ&c=slrrB7dE8n7gBJbeO0g-IQ&r=hgbDG_ZdQaorZsucl01zHg&m=Yn2a7P10qylNPjdZ499rPbNzetpn8RyAV870SJbr0hg&s=wwZt0ruHRcbRcKBOUphvqWKC9QI8lDUPt_L8YiYwln4&e=</a><br>
_______________________________________________<br>
3dem mailing list<br>
<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a><mailto:<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a>><br>
<a href="https://urldefense.proofpoint.com/v2/url?u=https-3A__mail.ncmir.ucsd.edu_mailman_listinfo_3dem&d=DwIGaQ&c=slrrB7dE8n7gBJbeO0g-IQ&r=hgbDG_ZdQaorZsucl01zHg&m=Yn2a7P10qylNPjdZ499rPbNzetpn8RyAV870SJbr0hg&s=wwZt0ruHRcbRcKBOUphvqWKC9QI8lDUPt_L8YiYwln4&e=" rel="noreferrer noreferrer" target="_blank">https://urldefense.proofpoint.com/v2/url?u=https-3A__mail.ncmir.ucsd.edu_mailman_listinfo_3dem&d=DwIGaQ&c=slrrB7dE8n7gBJbeO0g-IQ&r=hgbDG_ZdQaorZsucl01zHg&m=Yn2a7P10qylNPjdZ499rPbNzetpn8RyAV870SJbr0hg&s=wwZt0ruHRcbRcKBOUphvqWKC9QI8lDUPt_L8YiYwln4&e=</a><br>
_______________________________________________<br>
3dem mailing list<br>
<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a><mailto:<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a>><br>
<a href="https://urldefense.proofpoint.com/v2/url?u=https-3A__mail.ncmir.ucsd.edu_mailman_listinfo_3dem&d=DwIGaQ&c=slrrB7dE8n7gBJbeO0g-IQ&r=hgbDG_ZdQaorZsucl01zHg&m=Yn2a7P10qylNPjdZ499rPbNzetpn8RyAV870SJbr0hg&s=wwZt0ruHRcbRcKBOUphvqWKC9QI8lDUPt_L8YiYwln4&e=" rel="noreferrer noreferrer" target="_blank">https://urldefense.proofpoint.com/v2/url?u=https-3A__mail.ncmir.ucsd.edu_mailman_listinfo_3dem&d=DwIGaQ&c=slrrB7dE8n7gBJbeO0g-IQ&r=hgbDG_ZdQaorZsucl01zHg&m=Yn2a7P10qylNPjdZ499rPbNzetpn8RyAV870SJbr0hg&s=wwZt0ruHRcbRcKBOUphvqWKC9QI8lDUPt_L8YiYwln4&e=</a><br>
<br>
--<br>
David L. Stokes<br>
Skirball Institute, Dept. of Cell Biology<br>
NYU School of Medicine<br>
<a href="http://stokeslab.med.nyu.edu/" rel="noreferrer noreferrer" target="_blank">http://stokeslab.med.nyu.edu/</a><br>
tel: 212-263-1580<br>
fax: 212-263-2150<br>
<br>
_______________________________________________<br>
3dem mailing list<br>
<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a><mailto:<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a>><br>
<a href="https://mail.ncmir.ucsd.edu/mailman/listinfo/3dem" rel="noreferrer noreferrer" target="_blank">https://mail.ncmir.ucsd.edu/mailman/listinfo/3dem</a><br>
<br>
_______________________________________________<br>
3dem mailing list<br>
<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a><mailto:<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a>><br>
<a href="https://mail.ncmir.ucsd.edu/mailman/listinfo/3dem" rel="noreferrer noreferrer" target="_blank">https://mail.ncmir.ucsd.edu/mailman/listinfo/3dem</a><br>
<br>
-------------- next part --------------<br>
An HTML attachment was scrubbed...<br>
URL: <<a href="http://mail.ncmir.ucsd.edu/pipermail/3dem/attachments/20200224/d63b2ad4/attachment.html" rel="noreferrer noreferrer" target="_blank">http://mail.ncmir.ucsd.edu/pipermail/3dem/attachments/20200224/d63b2ad4/attachment.html</a>><br>
<br>
------------------------------<br>
<br>
Subject: Digest Footer<br>
<br>
_______________________________________________<br>
3dem mailing list<br>
<a href="mailto:3dem@ncmir.ucsd.edu" target="_blank" rel="noreferrer">3dem@ncmir.ucsd.edu</a><br>
<a href="https://mail.ncmir.ucsd.edu/mailman/listinfo/3dem" rel="noreferrer noreferrer" target="_blank">https://mail.ncmir.ucsd.edu/mailman/listinfo/3dem</a><br>
<br>
<br>
------------------------------<br>
<br>
End of 3dem Digest, Vol 150, Issue 68<br>
*************************************<br>
</blockquote></div>